Protocolo para inoculação artificial de sementes de soja Fusarium semitectum

Authors

  • Alice Beatriz Peña-Medina
  • Mario Fernando Pinel-Alvarez
  • Luiz Guilherme Lidoino de Carvalho
  • Cândida Renata Jacobsen de Farias

DOI:

https://doi.org/10.34117/bjdv9n10-011

Keywords:

fungo, esporulação, incidência, BDA-BSA

Abstract

O fungo F. semitectum é patogênico em sementes de soja por afetar negativamente a germinação em laboratório e no campo. Uma das limitações dos métodos de inoculação de sementes é a redução na produção de esporos, o que muita vezes dificulta o desenvolvimento de diversos estudos na área de fitopatologia. Diante da necessidade de esporulação fúngica, o estudo teve como objetivo induzir a produção de conidios de F. semitectum em sementes de soja, inoculadas artificialmente, utilizando BDA e BSA em diferentes tempos de inoculação (6 h; 12 h; 24 h; 48 h e 72 h). Foram avaliados incidência do fungo através do Blotter test e a produção de conídios. O delineamento foi inteiramente casualizado (DIC) em arranjo fatorial duplo (meio e tempo) com níveis de 5 e 2 de cada fator, respectivamente, com 4 repetições. A melhor resposta na produção de conidios foi com meio BSA, às 48 e 72 h.

References

AGRIOS, G. Plant Pathology. Nueva York: Elsevier Academic Press, 2005.

ALFENAS, A.C.; FERREIRA, F. A. Inoculação de Fungos fitopatónicos. In: ALFENAS, A.C.; MAFIA, R. G. (Org.). . Métodos em Fitopatol. Editora UF ed. Viçosa: Editora UFV, 2007. p. 117–137.

ARAÚJO, D. V.; POZZA, E. A.; MACHADO, J. C.; ZAMBENEDETTI, E. B.; CELANO, F. A.; CARVALHO, E. M.; CAMARGOS, V. N. Influência da Temperatura e do Tempo de Inoculação das Sementes de Algodão na Transmissibilidade de Colletotrichum gossypii var. cephalosporioides Autor para correspondência: Edson Ampélio Pozza. Fitopatologia Brasileira, v. 31, n. 1, p. 35–40, 2006. https://doi.org/10.1590/S0100-41582006000100006

DE LOURDES BALLARIS, A.; DA CRUZ MACHADO, J.; DE CARVALHO, M. L. M.; CAVARIANI, C. Sequential sampling of soybean and beans seeds for sclerotinia sclerotiorum detection (Lib.) DeBary. Journal of Seed Science, v. 36, n. 3, p. 295–304, 2014. http://dx.doi.org/10.1590/2317-1545v36n3985

DA SILVA BOTELHO, L.; BARROCAS, E. N.; DA CRUZ MACHADO, J.; DE SÁ MARTINS, R. Detection of Sclerotinia sclerotiorum in soybean seeds by conventional and quantitative PCR techniques. Journal of Seed Science, v. 37, n. 1, p. 55–62, 2015. http://dx.doi.org/10.1590/2317-1545v37n1141460

BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Manual de Análise Sanitária de Sementes. Brasília: Mapa/ACS, 2009.

FRANÇA, S. K. S. D.; SIQUEIRA, C. D. S.; GUIMARÃES, M. D. R. F.; MACHADO, J. D. C. Quantification and conceptual validation of the inocupotential of sclerotinia sclerotiorum in soybean and bean seeds. Journal of Seed Science, v. 43, p. 1–11, 2021. http://dx.doi.org/10.1590/ 2317-1545v43236031

MELLO, F. E. D.; SILVA, H. P. D.; CELESTINO, G. G.; LOPES, I. D. O. N.; BALBI-PEÑA, M. I.; GODOY, C. V. Crescimento micelial radial e esporulação de isolados de corynespora cassiicola. Summa Phytopathologica, v. 44, n. 4, p. 374–379, 2018. https://doi.org/10.1590/0100-5405/177612

DE SOUSA, M. V.; SIQUEIRA, C. da S.; MACHADO, J. da C. Uso de PCR convencional para a detecção de Corynespora cassiicola em sementes de soja. Journal of Seed Science, v. 38, n. 2, p. 85–91, 1 abr. 2016. https://doi.org/10.1590/2317-1545v38n2152049

GALLI, J. A.; PANIZZI, R. de C.; VIEIRA, R. D. RESISTÊNCIA DE VARIEDADES DE SOJA À MORTE DE PLÂNTULAS CAUSADA POR COLLETOTRICHUM TRUNCATUM. Arquivos do Instituto Biológico, v. 74, n. 2, p. 163–165, jun. 2007. https://doi.org/10.1590/1808-1657v74p1632007

GOULART, A. C. P. Fungos em Semente de Soja - Detecção, Importäncia e Controle. 2. ed. ed. Brasília, DF: Embrapa, 2018. v. 2. https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/bitstream/doc/252202/1/LV20055.pdf

______. Fungos em Sementes de Soja: Detecção, Importância e Controle. Dourados, MS: Embrapa Agropecuária Oeste, 2005. https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/bitstream/doc/252202/1/LV20055.pdf

GRABICOSKI, E. M. G.; JACCOUD FILHO, D. D. S.; PILEGGI, M.; HENNEBERG, L.; PIERRE, M. L. C.; VRISMAN, C. M.; DABUL, A. N. G. Rapid PCR-based assay for Sclerotinia sclerotiorum detection on soybean seeds. Scientia Agricola, v. 72, n. 1, p. 69–74, 2015. http://dx.doi.org/10.1590/0103-9016-2013-0395

HANADA, R. E.; GASPAROTTO, L.; PEREIRA, J. C. R. Esporulação de Mycosphaerella fijiensis em diferentes meios de cultura. Fitopatologia Brasileira, v. 27, n. 2, p. 170–173, 2002. https://doi.org/10.1590/S0100-41582002000200008

HAWA, M. M.; SALLEH, B.; LATIFFAH, Z. Characterization and intraspecific variation of Fusarium semitectum (Berkeley and Ravenel) associated with red-fleshed dragon fruit (Hylocereus polyrhizus [Weber] Britton and Rose) in Malaysia. African Journal of Biotechnology, v. 9, n. 3, p. 273–284, 2010. http://www.academicjournals.org/AJB

HENNEBERG, L.; GRABICOSKI, E.M.G.; JACCOUD-FILHO; D.D.S.; PANOBIANCO, M. Incidência de Sclerotinia sclerotiorum em sementes de soja e sensibilidade dos testes de detecção. Pesquisa Agropecuaria Brasileira, v. 47, n. 6, p. 763–768, 2012. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2012000600005

HENNING, A. A. Patologia e Tratamento de Sementes: Noções Gerais. Londrina, PR: Embrapa Soja-CNPSo, Documentos, 235, 2004. http://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/infoteca/handle/doc/469530

HENNING, A. A. .; FRANÇA NETO, J. de B. Problemas na avaliação da germinação de sementes de soja com alta incidência de Phomopis sp. Revista Brasileira de Sementes, v. 2, n. 3, p. 9–22, 1980. http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/handle/doc/444640

HERNÁNDEZ, V. G.; ZABOT, G.; ALVAREZ, M. F. P.-.; ALVES, M.; ANTUNES, I. F.; FARIAS, C. R. J. de. Variabilidade patogênica de populações multiespóricas e monospóricas de C. lindemuthianum em plântulas de feijão comum (Phaseolus vulgaris) / Pathogenic variability of multispóric and monosporic isolates of C. lindemuthianum in common bean seedlings (Phaseolus vulgaris). Brazilian Journal of Development, [S. l.], v. 6, n. 11, p. 88300–88315, 2020. https://doi.org/10.34117/bjdv6n11-303

HU, X.; WANG, J.; LI, R.; WU, X.; GAO, X.; LI, M. Establishment of an Artificial Inoculation Method of Ustilaginoidea virens without Damaging the Rice Panicle Sheaths. Plant Disease, v. 106, n. 1, p. 289–296, 2022. https://doi.org/10.1094/PDIS-12-20-2746-RE

KLINGELFUSS, L. H.; YORINORI, J. T.; DESTRO, D. Métodos de inoculação para quantificação de resistência em soja a Fusarium solani f. sp. glycines, em casa-de-vegetação. Fitopatologia Brasileira, v. 32, n. 1, p. 50–55, 2007. https://doi.org/10.1590/S0100-41582007000100007

LAI, X.; QI, A.; LIU, Y.; MENDOZA, L.D.R.; LIU, Z.; LIN, Z.; KHAN, M.F. Evaluating inoculation methods to infect sugar beet with Fusarium oxysporum f. Betae and F. Secorum. Plant Disease, v. 104, n. 5, p. 1312–1317, 2020. https://doi.org/10.1094/PDIS-09-19-1895-RE

LES, N.; HENNEBERG, L.; NADAL, V. G. R.; MULLER, M.; SZEMOCOVIAKI, A. G.; CARNEIRO, F. T.; FILHO, D. de S. J. Controle de Rhizoctonia solani com produtos biológicos no tratamento de sementes na cultura da soja/ Control of Rhizoctonia solani with biological products in the seed treatment in soybean. Brazilian Journal of Development, [S. l.], v. 6, n. 12, p. 99919–99935, 2020. DOI: 10.34117/bjdv6n12-470. https://doi.org/10.34117/bjdv6n12-470

LUKENS, R. J. Photo-Inhibition of Sporulation in Alternaria Solani. American Journal of Botany, v. 50, n. 7, p. 720–724, 1963. https://doi.org/10.1002/j.1537-2197.1963.tb12248.x

MIGLIORINI, P.; DA ROSA DORNELES, K.; RODRIGUES, G. F.; DE PAULA PACIENCIA, G.; DE TUNES, L. V. M. Métodos de inoculação de Colletotrichum lindemuthianum em sementes de feijão e danos em plântulas. 2017. https://doi.org/10.5007/2175-7925.2017v30n1p37

NOZAKI, M. de H.; CAMARGO, M.; BARRETO, M. Caracterização de Diaporthe citri em diferentes meios de cultura, condições de temperatura e luminosidade. Fitopatologia Brasileira, v. 29, n. 4, p. 429–432, 2004. https://doi.org/10.1590/S0100-41582004000400012

SILVA, J. L. da; TEIXEIRA, R. N. V. Esporulação e crescimento micelial de Fusarium solani em diferentes meios de cultura e regimes de luminosidade. Revista Agro@Mbiente on-Line, v. 6, n. 1, p. 47, 2012.

ZAUZA, E.A.V.; ALFENAS, A.C.; MAFIA, R. G. Esterilização, preparo de meios de cultura e fatores associados ao cultivo de fitopatógenos. In: ALFENAS, A.C.; MAFIA, R. G. (Org.). . Métodos em Fitopatol. Viçosa: Editora UFV, 2007. p. 23–50.

Published

2023-10-02

How to Cite

Peña-Medina, A. B., Pinel-Alvarez, M. F., de Carvalho, L. G. L., & de Farias, C. R. J. (2023). Protocolo para inoculação artificial de sementes de soja Fusarium semitectum. Brazilian Journal of Development, 9(10), 27633–27642. https://doi.org/10.34117/bjdv9n10-011

Issue

Section

Original Papers