Perfil toxicológico e efeito antioxidante e antiglicante <em>in vitro</em> de um extrato glicólico do resíduo do fruto da <em>Punica granatum</em>
Toxicological profile and in vitro antioxidant and antiglycolic effect of a glycolic extract of the fruit residue of Punica granatum
DOI:
https://doi.org/10.34117/bjdv8n11-209Keywords:
envelhecimento, fitocosmético, lipoperoxidaçãoAbstract
A casca do fruto da romãzeira (Punica granatum), a romã, é um resíduo produzido em abundância em território nacional. Sabendo-se que a espécie é rica em compostos fenólicos, metabólitos secundários com relevantes atividades terapêuticas, entre elas a antioxidante e antiglicante, e buscando suprir a demanda de fitocosméticos eficazes e seguros que possam prevenir o envelhecimento da pele; o presente estudo teve como objetivo analisar os aspectos fitoquímicos, antioxidantes e antiglicantes de um extrato produzido a partir da casca da romã, visando o aproveitamento integral do fruto. Para tanto, realizou-se os seguintes estudos in vitro: 1) fitoquímicos (dosagem de flavonoides, taninos condensados e hidrolisáveis); 2) citotoxicidade (MTT); 3) farmacológicos - atividade antioxidante (DPPH e lipoperoxidação) e atividade antiglicante no ensaio de albumina sérica bovina (BSA) com glicose e metilglioxal (MGO). O extrato apresentou o seguinte perfil fitoquímico de compostos fenólicos: flavonoides 1.9 ± 0.3 g de equivalente em quercetina para cada 100 g de extrato seco; taninos condensados 40.36 ± 9.5 g de equivalente em proantocianidina para cada 100 g de extrato seco e taninos hidrolisáveis 20.22 ± 6.3 de equivalente em ácido gálico para cada 100 g de extrato seco. Além de que no ensaio de MTT, a Concentração Citotóxica 50% para 24 h foi 899 ug/mL, para 48 h foi de 482 ug/mL e para 72 h foi 426 ug/mL. A atividade farmacológica, apresentou na concentração de 600 µg/mL uma atividade antioxidante para DPPH de 78.3% e uma atividade antiglicante de 62.19% no ensaio de lipoperoxidação; no sistema BSA/Glicose todas as concentrações promoveram 100% de atividade antiglicante e no BSA/MGO a concentração de 600 µg/mL promoveu atividade antiglicante em 40%. O extrato, portanto, se demonstra como um potencial candidato para formulação de um novo fitocosmético que possa ser utilizado na prevenção do envelhecimento da pele.
References
Abbasi, BH, Khan T; Khurshid R, Nadeem, M, Drouet S, Hano C. UV-C mediated accumulation of pharmacologically significant phytochemicals under light regimes in in vitro culture of Fagonia indica (L.). Scientific Reports, v. 11, 2021. doi: 10.1038/s41598-020-79896-6.
Agmon E, Stockwell BR. Homeostase lipídica e morte celular regulada. atual Opinião. Química Biol. n.39, p.83-89, 2017. doi: 10.1016/j.cbpa.2017.06.002
Amrani A, Lahneche AM, Benaissa O, Boubekri N, Demirtaş I, Benayache F, Zama D. In vitro Antiproliferative and inhibition of oxidative DNA damage activities of n-butanol extract of Limonium bonduelli from Algeria. Brazilian Archives of Biology and Technology, 2019, v. 62, 2019. doi.org/10.1590/1678-4324-2019170779.
Barrera G. Estresse Oxidativo e Produtos de Peroxidação Lipídica na Progressão e Terapia do Câncer. ISRN Oncol., p.1–21, 2012. doi.org/10.5402/2012/137289.
Bowe WP, Logan AC. Implicações clínicas da peroxidação lipídica na acne vulgar: Vinho velho em garrafas novas. Lipídios Saúde Dis., v.9, n.141, 2010. doi: 10.1186/1476-511X-9-141.
Bu J, Lin Y, Qing LQ, Hu G, Jiang P, Hu HF, Shen EX. Prediction of skin disease using a new cytological taxonomy based on cytology and pathology with deep residual learning method. Sci Rep., 2;11(1):13764, 2021. doi: 10.1038/s41598-021-92848-y.
Campos RP, Silva MJF, Silva, CF, Fragoso MR, Candido, CJ. Elaboração e Caracterização de Farinha da Casca de Pequi. Agroecologia, v. 1, n. 2, 2016.
Celi P. O papel do estresse oxidativo na saúde e produção de pequenos ruminantes. Rev. Brás. Zootec., v.39, p.348-363, 2010. doi: 10.1590/S1516-35982010001300038.
Celiksoy V, Moses RL, Sloan AJ, Moseley R, Heard CM. Evaluation of the In Vitro Oral Wound Healing Effects of Pomegranate (Punica granatum) Rind Extract and Punicalagin, in Combination with Zn (II). Biomolecules, v.25, n.10, p.1234, 2020. doi: 10.3390/biom10091234.
Chidambara MKN, Jayaprakasha GK, Singh RP. Studies on antioxidant activity of pomegranate (Punica granatum) peel extract using in vivo models. J Agric Food Chem., v.14 n.17, p.4791-5, 2022. doi: 10.1021/jf0255735. PMID: 12166961.
Chilukuri H, Kulkarni MJ, Fernandes M. Revisiting amino acids and peptides as anti-glycation agents. Medchemcomm., v.12, n.9, p.614-624, 2018. doi: 10.1039/c7md00514h.
Chyau CC, Chu CC, Chen SY, Duh PD. Djulis (Chenopodiun formosaneum) e seus compostos bioativos protegem contra o estresse oxidativo em células humanas HepG2. J. Função. Alimentos., n.18, p.159-170, 2015. doi: 10.1016/j.jff.2015.06.025.
Coudriet GM, Delmastro-Greenwood MM, Previte DM, Marré ML, O’Connor EC, Novak EA, Vincent G, Mollen KP, Lee S, Dong HH, et al. Treatment with a Catalytic Superoxide Dismutase (SOD) Mimetic Improves Liver Steatosis, Insulin Sensitivity, and Inflammation in Obesity-Induced Type 2 Diabetes. Antioxidants. n.6, p.85, 2017. doi: 10.3390/antiox6040085
Cruz-Valenzuela MR, Ayala-Soto RE, Ayala-Zavala JF, Espinoza-Silva BA, González-Aguilar GA, Martín-Belloso O, Soliva-Fortuny R, Nazzaro F, Fratianni F, Tapia-Rodríguez MR, Bernal-Mercado AT. Pomegranate (Punica granatum L.) Peel Extracts as Antimicrobial and Antioxidant Additives Used in Alfalfa Sprouts. Foods., v.6 n.11, p.2588, 2022. doi: 10.3390/foods11172588. PMID: 36076774; PMCID: PMC9455905.
Da Silva SF, Dias Ferreira-Romanichen, FM, Antonelli-Ushirobira TM. Antimicrobial activity in vitro of Punica granatum on gram-negative and gram-positive bacteria. Brazilian Journal of Development, v.7., n.11, pp.104581–104591, 2021. doi: 10.34117/bjdv7n11-196
Das AK, Rajkumar V., Nanda PK, Chauhan P., Pradhan SR, Biswas S. Eficácia antioxidante de Litchi (Litchi chinensis Sonn.) Extrato de pericarpo em nuggets de carne de ovelha. Antioxidantes., v. 5, n.16, 2016. doi: 10.3390/antiox5020016.
Dassprakash MV, Arun R, Abraham SK, Premkumar K. In vitro and in vivo evaluation of antioxidant and antigenotoxic potential of Punica granatum leaf extract. Pharm Biol., v.50, n.12, p.1523-30, 2012. doi: 10.3109/13880209.2012.689771.
Dil FA, Ranjkesh Z, Goodarzi MT. Uma revisão sistemática de plantas medicinais antiglicação. Diabetes Metab Syndr., n.13, p.1225-1229, 2019.
Dos Santos FAR, Xavier JA, da Silva FC, Merlin JPJ, Goulart MOF, Rupasinghe HPV. Antidiabetic, Antiglycation, and Antioxidant Activities of Ethanolic Seed Extract of Passiflora edulis and Piceatannol In Vitro. Molecules., v.24, n.13, p.4064, 2022. doi: 10.3390/molecules27134064.
El-Beltagi HS, Eshak NS, Mohamed HI, Bendary ESA, Danial AW. Physical Characteristics, Mineral Content, and Antioxidant and Antibacterial Activities of Punica granatum or Citrus sinensis Peel Extracts and Their Applications to Improve Cake Quality. Plants (Basel)., v.30, n.13, p.1740, 2022. doi: 10.3390/plants11131740.
Ferreira JB, Martins BHB, Tominaga WM, Lisboa EMJ, Albiero LR, Rosa AC, Sugui MM. Activity assessment antimutagenic / mutagenic Pomegranate (punica granatum l.) Through the in vivo test micronucleus. Scientific Electronic Archives, v.10 n.3, p.76–82, 2017. doi: 10.36560/1032017325
García, A. et al.Mobile phone platform as portable chemical analyzer. Sensors and Actuators B, v. 156, n. 1, p. 350-359, 2011. KHODAIE, L; BAMDAD, S.; DELAZAR, A.; NAZEMIYEH, H. Teores de antioxidantes, fenóis totais e flavonóides de dois pediculares L. Espécies do leste do azerbaijão, Irã. BioImpacts: BI, v.2, n.1, p.43–57, 2012.
Gaschler MM, Stockwell BR Peroxidação lipídica na morte celular. Bioquímica. Biophys. Res. Comum., n.482, p.419-425, 2017. doi: 10.1016/j.bbrc.2016.10.086.
Halliwell B. Peroxidação lipídica, antioxidantes e doenças cardiovasculares: Como devemos avançar?. Cardiovasc. Res., n.47, p.410-418, 2000. doi: 10.1016/S0008-6363(00)00097-3.
Jalali A, Kiafar M, Seddigh M, Zarshenas MM. Punica granatum as a Source of Natural Antioxidant and Antimicrobial Agent: A Comprehensive Review on Related Investigations. Curr Drug Discov Technol., v.18, n.2, p.207-224, 2021. doi: 10.2174/1570163817666200430001822.
Jardini FA et al. Avaliação da atividade antioxidante do extrato hidroalcoólico da romã (Punica granatum, L.) sobre células da linhagem Caco-2. Food Science and Technology, v. 27, suppl 1, pp. 80-83, 2007. doi:10.1590/S0101-20612007000500014.
Jung E, Park SB, Jung WK, Kim HR, Kim J. Antiglycation Activity of Aucubin In Vitro and in Exogenous Methylglyoxal Injected Rats. Molecules, v.10, s.24, n.20, p.3653, 2019. doi: 10.3390/molecules24203653. PMID: 31658696; PMCID: PMC6832881.
Lotito S., Frei B. Consumo de alimentos ricos em flavonóides e aumento da capacidade antioxidante do plasma em humanos: causa, consequência ou epifenômeno?. Biologia e Medicina dos Radicais Livres, v.4, n.12, p.1727-1746, 2006. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2006.04.033.
Lyu JL, Liu YJ, Wen KC, Chiu CY, Lin YH, Chiang HM. Protective Effect of Djulis (Chenopodium formosanum) Extract against UV- and AGEs-Induced Skin Aging via Alleviating Oxidative Stress and Collagen Degradation. Molecules, v.4, s.27, n.7, p.2332, 2022. doi: 10.3390/molecules27072332.
Magangana TP, Makunga NP, Fawole OA, Opara UL. Processing Factors Affecting the Phytochemical and Nutritional Properties of Pomegranate (Punica granatum L.) Peel Waste: A Review. Molecules, v.14, s.25, n.20, p.4690, 2020. doi: 10.3390/molecules25204690.
Martins, R. O. Desenvolvimento de uma nova metodologia MISPE para extração de taninos. 2019. 67 f. Dissertação (Mestrado em Química) - Universidade Federal de Goiás, Goiânia, 2019.
Mendonça JDS, Guimarães RCA, Zorgetto-Pinheiro VA, Fernandes CDP, Marcelino G, Bogo D, Freitas KC, Hiane PA, de Pádua Melo ES, Vilela MLB, Nascimento VAD. Natural Antioxidant Evaluation: A Review of Detection Methods. Molecules, v.27 n.11, p.3563, 2022. doi: 10.3390/molecules27113563.
Mesias M., Navarro M., Gokmen V., Morales FJ Efeito antiglicativo de extratos de sementes de frutas e vegetais: Inibição da formação de AGEs e habilidades de captura de carbonil. J. Sci. Alimentos Agrícolas, v.9, p.2037–2044, 2013. doi: 10.1002/jsfa.6012.
Milman N, Pedersen P, Steig T, Byg KE, Graudal N, Fenger K. Hemocromatose hereditária clinicamente evidente na Dinamarca 1948–1985: Epidemiologia, fatores de significância para a sobrevivência a longo prazo e causas de morte em 179 pacientes. Ana Hematol., v.80, p.737–44, 2001.
Moga M. A., Dimienescu O. G., Bălan A., et al. Pharmacological and therapeutic properties of Punica granatum phytochemicals: possible roles in breast cancer. Molecules, v.26, n.4, p.1054, 2021. doi: 10.3390/molecules26041054.
Mohd Dom NS, Yahaya N, Adam Z, Nik Abd Rahman NMA, Hamid M. Antiglycation and Antioxidant Properties of Ficus deltoidea Varieties. Evid Based Complement Alternat Med., v,7, p.6374632, 2020. doi: 10.1155/2020/6374632.
Moreira GMB, Matsumoto LS, Silva RMG, Domingues SPF, Mello-Peixoto ECT.Atividade antibacteriana do extrato hidroalcoólico de Punica granatum Linn. sobre Staphylococcus spp. isolados de leite bovino. Pesquisa Veterinária Brasileira, v. 34, n. 7, p. 626-632, 2014. doi.org/10.1590/S0100-736X2014000700003.
Neha K, Haider MR, Pathak A, Yar MS. Perspectivas medicinais de antioxidantes: Uma revisão. Eur J Med Chem., v..178, p.687-704, 2019.
Oliveira LP,Pinheiro RC, Vieira MS, Paula JR, Bara MRF, Marize MCV, Ligianne P. et al. Atividade citotóxica e antiangiogênica de Punica granatum L., Punicaceae. Revista Brasileira de Farmacognosia, v. 20, n. 2, pp. 201-207, 2010. doi.org/10.1590/S0102-695X2010000200011
Oliveira, LML. Punica granatum: quantification of extract of polyphenols and potential antifungal against candida albicans. Tese (Doutorado) – Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Odontologia de Araçatuba, 2016.
Nam TG. Lipid peroxidation and its toxicological implications. Toxicol Res., v.27, n.1, p.1-6, 2011. doi: 10.5487/TR.2011.27.1.001.
Peršurić Ž, Saftić Martinović L, Malenica M, Gobin I, Pedisić S, Dragović-Uzelac V, Kraljević Pavelić S. Assessment of the Biological Activity and Phenolic Composition of Ethanol Extracts of Pomegranate (Punica granatum L.) Peels. Molecules., v.14, s.25, n.24, p.5916, 2020. doi: 10.3390/molecules25245916.
Qin S, Hou DX. Regulações múltiplas do sistema Keap1/Nrf2 por fitoquímicos dietéticos. Mol. Nutr. Alimentos Res., n. 60, p.1731-1755, 2016. doi: 10.1002/mnfr.201501017.
Ramana KV, Srivastava S., Singhal SS Lipid Peroxidation Products in Human Health and Disease 2016. Oxid. Med. Célula. Longev., n.2017, p.1–2, 2017. doi: 10.1155/2017/2163285.
Sabir SM, Abbas SR, Shahida S. et al. Antioxidante in-vitro , atividades peroxidativas antilipídicas e estudo in- silico de compostos bioativos de Terminalia chebula . Clin Phytosci, n.6, p.83, 2020. doi: 10.1186/s40816-020-00233-5
Santos-Buelga C, González-Paramás AM, Oludemi T, Ayuda-Durán B, González-Manzano S. Plant phenolics as functional food ingredients. Adv Food Nutr Res.,n.90, p.183-257, 2019. doi: 10.1016/bs.afnr.2019.02.012.
Seidi, K., Jahanban-Esfahlan, R., Abasi, M. Propriedades antitumorais do extrato de sementes de Punica granatum (romã) em diferentes células cancerosas humanas. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention, v.17, v.3, p. 1119-1122, 2016.
Silva-Palacios A., Ostolga-Chavarría M., Zazueta C., Königsberg M. Nrf2: regulação molecular e epigenética durante o envelhecimento. Envelhecimento Res. Rev., n.47, p.31-40, 2018. doi: 10.1016/j.arr.2018.06.003.
Suresh DR, Annam V. Peroxidação lipídica e capacidade antioxidante total na saúde e na doença - Fisiopatologia e marcadores: Uma visão geral. Int. J. Med. Sci. Cura Pública., v.2, n.478, 2013.
Thilagavathi T, Renuka R, Priya RS. Bio-synthesis of silver nanoparticles using Punica granatum (pomegranate) peel extract: A novel approach toward waste utilization. Int. J. Adv. Sci. Eng, v.3, n.1, p.234–236, 2016.
Turrini E, Ferruzzi L, Fimognari C. Potential effects of pomegranate polyphenols in cancer prevention and therapy. Oxidative Medicine and Cellular Longevity,p.1-15, 2015. doi: 10.1155/2015/938475.938475
Y.G. Faten; F. Abdelsalam; El-Zalaki, E.S. and Moharam Characterization of Wastes from Pomegranate (Punica granatum L.) Juice and Its Use as a Functional Drink. Egypt. J. Food Sci. 46, 91-100, 2018.
Xu W, Deng Z, Guo H, Ling P. A rapid and sensitive determination of aucubin in rat plasma by liquid chromatography–tandem mass spectrometry and its pharmacokinetic application. Biomédical Cromatography, v.26, n. 9, p.1066-1070, 2012. doi: 10.1002/bmc.1748.
