Crecimiento de Nannochloropsis oculata (Droop, 1955) con diferentes medios nutritivos y fotoperiodos en laboratorio

Autores

  • José Alfredo Solís Echeverría
  • Gustavo Enrique Mendoza Arroyo
  • Rodrigo Raúl García Torcuato
  • Juan Quintín Román Tiburcio
  • Itzel Alejandra Chim Chí

DOI:

https://doi.org/10.34188/bjaerv9n1-082

Palavras-chave:

densidad celular, F2 de Guillard, microalgas, densidad población

Resumo

Este estudio evaluó el crecimiento de la microalga Nannochloropsis oculata en laboratorio, comparando dos medios nutritivos —F/2 de Guillard (1 mL/L) y fertilizante foliar Bayfolan (0.75 mL/L)— bajo tres fotoperiodos (24:00, 16:08 y 12:12 h luz/oscuridad). El experimento duró cinco días con condiciones controladas de temperatura (20-22 °C), salinidad (30 ups), pH (7-8) e intensidad lumínica (50 µmol m⁻² s⁻¹). Se empleó un diseño experimental por triplicado y análisis de varianza (ANOVA) de dos vías. Los resultados indicaron que el medio F/2 de Guillard superó significativamente al Bayfolan en todos los parámetros. Las mayores concentraciones celulares se obtuvieron con F/2 en fotoperiodos de 16:08 y 24:00 h, alcanzando valores de hasta 10.33 x 10⁶ cel/mL. El mejor desempeño poblacional se registró con el tratamiento F/2 y un fotoperiodo de 24:00 h, obteniendo la mayor tasa de crecimiento específico (TCE) de 1.007 div/día y el menor tiempo de duplicación (Td) de 0.703 días. Por el contrario, el Bayfolan presentó el crecimiento más deficiente, especialmente bajo el fotoperiodo 12:12 h. En conclusión, el medio F/2 de Guillard, combinado con periodos de luz prolongados (16 a 24 horas), optimiza la producción de N. oculata. Estos hallazgos sugieren que es posible maximizar el rendimiento biológico y potencialmente reducir costos operativos mediante la selección estratégica del medio y el manejo eficiente del fotoperiodo en cultivos controlados.

 

Referências

ALEJOS, R.; YNGA, G.; GASPAR, W.; NIÑO, A. Manual de desinfección y esterilización del material de laboratorio de alimento vivo: microalgas. Inf. Inst. Mar Perú, n. 48, p. 50-66, 2021.

ÁLVAREZ, M.Y. Determinación del contenido proteico de biomasa húmeda y harina de tres especies de microalgas marinas: Chlorella vulgaris, Nannochloropsis oculata y Tetraselmis striata, en el laboratorio de la UNAM – filial Ilo, durante el 2017. p. 135. Tesis (Licenciatura). Universidad Nacional de Moquegua. Moquegua, Perú, 2017.

ARBAIZA, S.; CASTAÑEDA, M.; ADVÍNCULA, O.; MEZA, V. Efecto del fotoperiodo y el uso de un nutriente foliar comercial en el crecimiento (biomasa) de Pyropia sp. Chi “cochayuyo” bajo condiciones controladas de cultivo. Anales científicos, n. 81, p. 347-354, 2020.

BRITO, D.; CASTRO, A.; COLIVET, J.; GÓMEZ, E.; MORA, R. Cinética de crecimiento de un cultivo mixto de las microalgas Hyaloraphidium contortum y Pseudokirchneriella subcapitata. Interciencia, n. 38, p. 604-608, 2013.

CAÑAVATE, H.P. Funciones de las microalgas en acuicultura. In: Las algas como recurso. Valorización, aplicaciones industriales y tendencias. CETMAR, p.193-205, 2014.

CARVAJAL-OSES, M., CHACÓN-GUZMÁN, J.; HERRERA-ULLOA, A. Optimización en la producción de la microalga marina Nannochloropsis oculata en un fotobiorreactor tubular helicoidal. Tecnología en Marcha, n. 31, p. 117-126, 2017.

CHASQUIBOl, C.S. Revisión de las técnicas de producción de biocombustible a partir de microalgas. 2021, p.79. Tesis (Licenciatura). Universidad César Vallejo, Perú, 2021.

CHELE, P.J. Cultivo heterotrófico de Scenedesmus sp. en biorreactores: Incremento de la fracción lipídica. [Tesis de licenciatura]. Universidad Guayaquil, Ecuador. 51 p. 2021.

CUELLO, M.C., COSGROVE, J.J.; RANDHIR, A.; VADIVELOO, A; MOHEIMANI, N.R. Comparison of continuous and day time only mixing on Tetraselmis suecica (Chlorophyta) in out-door raceway ponds. Journal of Applied Phycology, n. 27, p. 1783-1791, 2014.

FLORES-RAMOS, L.; RUIZ-SOTO, A.; OSCANOA-HUAYNATE, A.; CERVANTES-GALLEGOS, A. Extracción e identificación de lípidos polares de las microalgas Nannochloropsis oceanica y Desmodesmusas asymmetricus. Rev. Colomb. Quim., no. 49, p. 3-11, 2020.

GUAYARA, A.J. Producción de biomasa microalgal en fotobiorreactores tubulares al aire libre utilizando fertilizantes como medio de cultivo. Tesis (Maestría). 2018, p.103. Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia, 2018.

GUILLARD, R.L. ; SIERACKI, M.S. Counting cells in cultures with the light microscope. In: Anderson, R.A. (ed.). Algal culturing techniques. Elsevier, no. 16, p. 239-252, 2005.

HERNÁNDEZ, A.N. Evaluación del crecimiento y contenido de lípidos de Chlorella vulgaris y Nannochloropsis oculata en diferentes medios de cultivo. Tesis (Maestría). 2022, p. 41. Universidad Autónoma de San Luis Potosí. San Luis Potosí, México, 2022.

Ma, Y.; Wang, Z.; Yu, C.; Yin, Y.; Zhou, G. Evaluation of the potential of 9 Nannochloropsis strains for biodiesel production. Bioresource Technology, n.167, p. 503-509, 2014.

MÉNDEZ-ANCA, S.; ÁLVAREZ, Y.; SOSA, L.E.; VIZCARRA, Y.G. Concentración celular y biomasa de tres especies de microalgas: Chlorella vulgaris, Nannochloropsis oculata y Tetraselmis striata. Rev. Investig. Altoadin, n. 22, p.155-160, 2020.

OSORIO, K.; PALACIOS, K.; LUMBI, D.; HSIEH, P.; ZUNIGA, G.C.; AGUILAR, A. Capacidad reproductiva de Nannochloropsis oculata en diferentes concentraciones de salinidad y fertilización: una contribución a la bioeconomía acuícola. Bioeconomía y Cambio Climático, no.6, p.1440-1445, 2020.

OUYANG, Y.; ZHAO, Y.; SUN, S.; HU, C.H.; PING, L. Effect of light intensity on the capability of different microalgae species for simultaneous biogas upgrading and biogas slurry nutrient reduction. Int. Biodeter.  Bio-degr., no. 104, p. 157-163, 2015.

PAES, C.; FARIA, G.; TINOCO, N.; CASTRO, D.; BARBARINO, E.; LAURENCO, S. Growth, nutrient uptake and chemical composition of Chlorella sp. and Nannochloropsis oculata under nitrogen starvation. Lat. Am. J. Aquat. Res. No. 44, p. 275- 292, 2016.

PANTA, V.R.; MACAY, G.A.; MONCAYO, Z.E.; VÉLEZ, C.J. Crecimiento de las microalgas Chaetoceros gracilis e Isochrysis galbana con fertilizantes agrícolas, en laboratorio. La Técnica, no.16, p. 44-55, 2016.

PARMAR, A.; SINGH, N.K.; PANDEY, A.; GNANSOUNOU, E.; MADAMWAR, D. Cyanobacteria and microalgae: a positive prospect for biofuels. Bioresource Technology, no. 102, p. 10163-10172, 2011.

PEREIRA, G. F.; JÁUREGUI, R.A.; DEVIA, B.A.; ROJAS, R.J. Cultivo de microalgas Isochrysis galbana y Nannochloropsis sp. para alimentación de larvas de peces marinos. Mutis, no. 7, p. 81-85, 2017.

PIÑA, P.; MEDINA, A.; NIEVES, M.; LEAL, S.; LÓPEZ -ELÍAS, J.; GUERRERO, M. Cultivos de cuatro especies de microalgas con diferentes fertilizantes utilizados en acuicultura. Investigaciones marinas, no 28, p. 225-236, 2007.

PRIETO, M.; MOGOLLON, M.; CASTRO, A.; SIERRA, L. Efecto del medio y condiciones de cultivo en la productividad de tres diatomeas marinas con potencial acuícola. MVZ- Córdoba, no. 10, p. 544-554, 2005.

SPOLAORE, P.; JOANNIS-CASSAN, C.; DURAN, E.; ISAMBERT, A. Optimization of Nannochloropsis oculata growth using the response surface method. Journal of Chemical Technology and Biotechnology, no. 81, p. 1049-1056, 2006.

TADEO-SÁNCHEZ, L.; PUENTES-CÁRDENAS, I.; FLORES-ORTIZ, C.; SÁNCHEZ-GARCÍA, D.; PINEDA-CAMACHO, G.; CRISTIANI-URBINA, E. Producción de biodiésel por Nannochloropsis sp. bajo diferentes condiciones ambientales. Rev. Cubana de Química, no. 26, p. 276-298, 2014.

URIBE, T. E. Cultivo de microalgas. En: Cultivo de peces marinos. Chile: FACIMAR- UCN, p. 95-137,1994.

VADIVELOO, A.; MOHEIMANI, N.R.; COSGROVE, J.J.; BAHRI, P.; PARLEVLIET, D. Effect of different light spectra on the growth and productivity of acclimated Nannochloropsis sp. (Eustigmatophyceae). Algal Research, no. 8, p.121-127, 2015.

VALENZUELA-ESPINOZA, E.; LAFARGA-DE LA CRUZ, F.; MILLÁN-NÚÑEZ, R.; NÚÑEZ-CEBRERO, F. Crecimiento, consumo de nutrientes y composición proximal de Rhodomonas sp cultivada con medio F/2 y fertilizantes agrícolas. Ciencias Marinas, no. 31, p. 79–89, 2005.

WAHIDIN, S.; IDRIS, A.; MUHAMMAD, S.S. The influence of light intensity and photoperiod on the growth and lipid content of microalgae Nannochloropsis sp. Bioresource Technology, no. 129, p. 7-11, 2013.

YNGA, G.; NIÑO, A. Manual para producción de microalgas marinas en el Instituto del Mar del Perú. Inf. Inst. Mar Perú, no. 46, p. 5-16, 2019.

ZHU, Y.; DUNFORD, N.T. Growth and Biomass Characteristics of Picochlorum oklahomensis and Nannochloropsis oculata. J. Am. Oil Chem. Soc., no. 90, p. 841-849, 2013.

ZUANG, L.L.; YU; D.; ZHANG, J.; LIU, F.; WU, Y.H.; ZHANG, T.Y.; DAO, G.H.; HU, H.Y. The characteristics and influencing factors of the attached microalgae cultivation: A review. Renewable and Sustainable Energy Reviews, no. 94, p. 1110-1119, 2018.

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Publicado

2026-02-17

Como Citar

Echeverría, J. A. S., Arroyo, G. E. M., Torcuato, R. R. G., Tiburcio , J. Q. R., & Chí, I. A. C. (2026). Crecimiento de Nannochloropsis oculata (Droop, 1955) con diferentes medios nutritivos y fotoperiodos en laboratorio. Brazilian Journal of Animal and Environmental Research, 9(1), e85762. https://doi.org/10.34188/bjaerv9n1-082

Edição

Seção

Artigos originais