Sorologia e diagnóstico molecular em camudongos para detecção de Toxoplasma gondii em um equino no sul da Bahia
DOI:
https://doi.org/10.34188/bjaerv8n1-069Palavras-chave:
bioensaio, PCR, sorologia, toxoplasmose, zoonoseResumo
O objetivo deste estudo foi diagnosticar a presença de Toxoplasma gondii em um cavalo com sintomas neurológicos, através de um bioensaio em camundongos. Fragmentos do cérebro deste cavalo foram seccionados e colocados individualmente em tubos tipo Falcon estéreis de 50 mL com solução salina tamponada com fosfato (PBS) contendo penicilina benzatina (1000 UI/mL) e estreptomicina (100 mg/mL). Amostras do cérebro foram testadas por bioensaio em camundongos na tentativa de isolar o parasita ou o DNA do parasita. Todos os camundongos sobreviveram ao período experimental e foram sacrificados e necropsiados 60 dias após a inoculação. Durante a necrópsia dos camundongos, o sangue foi coletado por via intracardíaca para testes sorológicos e fragmentos do coração, baço, pulmão, cérebro e fígado foram coletadas e colocadas em frascos livres de DNase e RNase, tubos Eppendorf a -20ºC para PCR. Foi realizada uma RIFI para detecção de anticorpos contra T. gondii, as lâminas foram sensibilizadas com taquizoítos da cepa RH. Para amplificação do DNA de T. gondii foi realizada uma PCR e, posteriormente, uma Nested PCR. Um dos camundongos foi soropositivo para T. gondii com títulos de 1:64. Na PCR convencional e na Nested PCR, nenhum dos tecidos do camundongo foram positivos. Conclui-se que cavalos com sintomas neurológicos podem ser fonte de infecção por T. gondii em outras espécies animais, representando assim um risco para outros animais e humanos.
Referências
Birkenheuer AJ, Levy MG, Andbreitschwerdt EB. Development and evaluation of a seminested PCR for detection and differentiation of Babesia gibsoni (Asiangenotype) and B. canis DNA in canine blood samples. Journal of Clinical Microbiology. 2003;41(9):4172-4177.
Camossi LG, Silva AV, Langoni H. Inquérito sorológico para toxoplasmose em equinos na região de Botucatu-SP. Arquivos Brasileiros da Medicina Veterinária e Zootecnia. 2010;62(2):484-488.
Costa, H. C. C., Bezerra, A. C. P. A., Brito , J. L., de Franklin , K. B. L., Souza , M. E. L., Bezerra, T. de A., & Moreira, E. A. C. (2023). Abate clandestino e sua associação com a transmissão de zoonoses: Clandestine slaughter and its association with the transmission of zoonoses. Brazilian Journal of Animal and Environmental Research, 6(2), 1178–1186.
Dubey JP, Miller NL, Frenkel, JK. The Toxoplasma gondii oocyst from cat feces. The Journal of Experimental Medicine. 1970;132(4):636–662.
Dubey JP. Advances in the life cycle of Toxoplasma gondii. International Journal for Parasitology. 1998A;28(7):1019-1024.
Dubey JP. Refinement of pepsin digestion method for isolation of Toxoplasma gondii from infected tissues. Veterinary Parasitology. 1998b;74:75–77.
Dubey JP, Jones JL. Toxoplasma gondii infection in humans and animals in the United States. International Journal Parasitology. 2008;38(11):1257-1278.
Dubey JP. Toxoplasmosis of Animals and Humans. 2 ed. Boca Raton: CRC Press, 2010, p.336.
Elbez-Rubinstein A, Ajzenberg D, Dardé ML, et al. Congenital toxoplasmosis and reinfection during pregnancy: case report, strain characterization, experimental model of reinfection, and review. Journal of Infectious Diseases. 2009;199(2):280–285.
Evers F, Garcia JL, Navarro IT, et al. Diagnosis and isolation of Toxoplasma gondii in horses from Brazilian slaughterhouses. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 2013;22(1):58-63.
Habibi GR, Imani AR, Gholami MR, et al. Detection and identification of Toxoplasma gondii type one infection in sheep aborted fetuses in Qazvin Province of Iran. Iranian Journal of Parasitology. 2012;7(3):64-72.
Hill DE, Chirukandoth S, Dubey JP. Biology and epidemiology of Toxoplasma gondii in man and animals. Animal Health Research Reviews. 2005;6(1):41-61.
Homan WL, Vercammen M, De Braekeleer J. IdentiWcation of a 200 to 300 fold repetitive 529 bp DNA fragment in Toxoplasma gondii, and its use for diagnostic and quantitative PCR. International Journal of Parasitology. 2000;30(1):69–75.
Pomares C, Ajzenberg, D, Bornard L, et al. Toxoplasmosis and horse meat, France [letter]. Emerging Infectious Diseases. 2011;17(7):1327–1328.
James KE, Smith WA, Packham AE, et al. Toxoplasma gondii seroprevalence and association with equine protozoal myeloencephalitis: A case– control study. The Veterinary Journal. 2017;224:38-43.
Kalambhe D, Gill J., Singh BB. Molecular detection of Toxoplasma gondii in the slaughter sheep and goats from North India. Veterinary Parasitology. 2017;241:35-38.
Klun I, Uzelac A, Villena I, et al. The first isolation and molecular characterization of Toxoplasma gondii from horses in Serbia. Parasites and Vectors. 2017;10(1):1-9.
Lacerda LC, Silva AN, Freitas JS, et al. Feline immunodeficiency virus and feline leukemia virus: frequency and associated factors in cats in northeastern brazil. Genetics and Molecular Research. 2017;16(2):1-8.
Munhoz AD, Souza MA, Costa SCL, et al. Factors associated with the distribution of natural Toxoplasma gondii infection among equids in Northeastern Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 2019;28(2):283-290.
Oliveira, U.V., Varjão, J.L., de Jesus Deiró, A.G., Maciel, B.M., Silva, F.L., Pinheiro, A.M., Gondim, L.F., & Munhoz, A.D. Isolation of Toxoplasma gondii from the masseter muscles of equines destined for human consumption in a slaughterhouse in southern Brazil. Journal of Parasitic Diseases, 2024; 1-9.
Opsteegh M, Teunis P, Zuchner L, et al. Low predictive value of seroprevalence of Toxoplasma gondii in cattle for detection of parasite DNA. International Journal for Parasitology. 2011;41:343–354.
Papini RA, Buzzone G, Nardoni S, et al. Seroprevalence and genotyping of Toxoplasma gondii in horses slaughtered for human consumption in Italy. Journal of Equine Veterinary Science. 2015;35(8):657–661.
Paştiu AI, Györke A, Kalmár Z, et al. Toxoplasma gondii in horse meat intended for human consumption in Romania. Veterinary Parasitology. 2015;212(3-4):393-395.
Stanciu S. Horse Meat consumption - between scandal and reality. Procedia Economics and Finance. 2015;23:697–703.
Stelmann UJP, Camossi LG, da Silva RC, et al.. Antibodies against Toxoplasma gondii (Apicomplexa: Toxoplasmatinae) in horses from Serrana microregion of the State of Rio de Janeiro, Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Medicine. 2014;35(2):22–27
Tenter AM, Heckeroth AR, Weiss LM. Toxoplasma gondii: from animals to humans. International Journal Parasitology. 2000;30(12-13): 1217-1258.
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