Diversidade da microbiota de fungos da própolis in natura / Diversity of in natura propolis fungal microbiota

Autores

  • Mariza Alves Ferreira
  • Rodrigo Arthur Fonseca Costa
  • Aline Simões da Rocha Bispo
  • Altino Branco Choupina
  • Norma Suely Evangelista-Barreto
  • Carlos Alfredo Lopes de Carvalho
  • Maria Letícia Miranda Fernandes Estevinho
  • Geni da Silva Sodré

DOI:

https://doi.org/10.34188/bjaerv4n4-122

Palavras-chave:

ITS, endonucleases, Stagonosporopsis cucurbitacearum, Candida sp.

Resumo

O presente estudo teve por objetivo realizar a identificação dos fungos encontrados na própolis produzido por Apis mellifera L. da Baía do Iguape, Brasil. Para tanto, foram utilizadas técnicas morfológicas, bioquímicas e moleculares, sendo averiguado o perfil de restrição gerado por espaçador interno transcrito (ITS1 e ITS4). O tamanho dos produtos de PCR foi analisado quanto ao perfil de restrição obtidos com endonuclease (HhaI, HaeIII e HinfI) por espécie. Foram identificadas dezesseis  espécies de fungos filamentosos: Flavodon flavus,  Aspergillus nomius, Aspergillus versicolor, Cladosporium sp., Coniothyrium sidae, Didymella sp., Paecilomyces variotii, Cladosporium cladosporioides, Penicillium citrinum, Fusarium incarnatum, Penicillium chermesinum, Phoma sp., Stagonosporopsis valerianellae, Phoma medicaginis, Paraphoma fimeti e Stagonosporopsis cucurbitacearum; e seis  espécies de leveduras: Candida tropicalis, Candida guiliermondii, Candida famata, Kodomala ohmeri, Trichosporon asahiu e Cryptococcus laurentii. Stagonosporopsis cucurbitacearum e leveduras pertencentes ao gênero Candida foram os microrganismos de maior ocorrência nas amostras da própolis provenientes da Baía do Iguape, Brasil.

Referências

ALMUHAYAWI, M. S. Propolis as a novel antibacterial agent. Saudi Journal of Biological Sciences, v. 27, n. 11, p.3079-3086, 2020. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2020.09.016

CARVALHO, M.; MEIRINHOS, S.; ESTEVINHO, L. M.; CHOUPINA, A. Yeast species associated with honey: different identification methods. Archivos de Zootecnia, p. 103 - 113, 2010.

CASTELLANI, A. The “water cultivation” of pathogenic fungi. Journal of Tropical Medicine and Hygiene, v.66, p. 283 - 284, 1963.

CHEN, Q.; JIANG, J. R.; ZHANG, G. Z.; CAI, L.; CROUS, P. W. Resolving the Phoma enigma. Studies in Mycology, v.82, p. 137-217, 2015. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2015.10.003

CHEN, Y. W.; YE, S. R.; TING, C.; YU, Y. H. Antibacterial activity of propolis from Taiwanese green propolis. Journal of Food and Drug Analysis, v.26, n. 2, p. 761-768, 2018. https://doi.org/10.1016 / j.jfda.2017.10.002

DAS, S.; DASH, H. R.; MANGWANI, N.; CHAKRABORTY, J.; KUMARI, S. Understanding molecular identification and polyphasic taxonomic approaches for genetic relatedness and phylogenetic relationships of microorganisms. Journal of Microbiological Methods, v.103, p. 80-100, 2014. https://doi.org/10.1016/ j.mimet.2014.05.013.

DRESCH, F.; LANA, D. F. D.; MACIEL, M. J.. Avaliação das comunidades fúngicas encontradas em amostras de solo: uma revisão sistemática da literatura. Revista Ibero Americana de Ciências Ambientais, v.10, n.6, p.67-76, 2019. DOI: http://doi.org/10.6008/CBPC2179-6858.2019.006.0007

FRANCHIN, M.; FREIRES, I. A.; LAZARINI, J. G.; NANI, B. D.; CUNHA, M. G.; COLÓN, D. F.; ALENCAR, S. M.; ROSALEN, P. L. The use of Brazilian propolis for discovery and development of novel anti-inflammatory drugs. European Journal of Medicinal Chemistry, v.153, p.49-55, 2018. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2017.06.050

GRUYTER, J. D.; WOUDENBERG, J. H. C; AVESKAMP, M. M.; VERKLEY G. J. M; GROENEWALD, J. Z.; CROUS, P. W. Systematic reappraisal of species in Phoma section Paraphoma, Pyrenochaeta and Pleurophoma. Mycologia, v.102, n.5, p.1066 – 1081, 2010. https://doi.org/10.3852/09-240.

GRUYTER, J. D.; WOUDENBERG, J. H. C.; AVESKAMP, M. M.; VERKLEY, G. J. M.; GROENEWALD, J. Z.; CROUS, P. W. Redisposition of Phoma-like anamorphs in Pleosporales. Studies in Mycology, v.75, n.1, p.1-36, 2013. https://doi.org/10.3114/ sim0004

HORN, D. L.; NEOFYTOS, D.; ANAISSIE, E. J.; FISHMAN, J. A.; STEINBACH, W. J.; OLYAEI, A. J.; MARR, K. A; PFALLER, M. A.; CHANG, C. H.; WEBSTER, K. M. Epidemiology and outcomes of candidemia 41 in 2019 patients: data from the prospective antifungal therapy alliance registry. Clinical Infectious Diseases, v.48, n.12, p.1695 - 1703, 2009. https://doi.org/10.1086/599039

HOUBRAKEN, J. A. M. P.; FRISVAD, J. C.; SAMSON, R. A. Taxonomy of Penicillium citrinum and related species. Fungal Diversity, v.44, p.117-133, 2010. https://doi.org/10.1007/s13225-010-0047-z

HOUBRAKEN, R. P. de V.; SAMSON, R. A. Modern taxonomy of biotechnologically important Aspergillus and Penicillium species. Advances in Applied Microbiology, v.86, p.199 - 249, 2014. https://doi.org/10.1016 / B978-0-12-800262-9.00004-4

HUSSAIN, H.; KOCK, I.; AHMED, A.H.; AHMED, K.A.R.; ABBAS, G.; GREEN, I.R.; SHAH, A.; BADSHAH, A.; SALEEM, M.; DRAEGER, S.; SCHULZ, B.J.; KROHN, K. Antimicrobial chemical constituents from endophytic fungus Phoma sp. Asian Pacific Journal of Tropical Medicine, v.7, n.9, p. 699-702, 2014. https://doi.org/10.1016/S1995-7645(14)60119-X.

HUMBER, R. A. Seeking stability for research and applied uses of entomopathogenic fungi as biological control agents, Journal of Asia-Pacific Entomology, v.19, p. 1019 - 1025, 2016.

KARATAY, S. E.; DONMEZ, G. An economical phenol bioremoval method using Aspergillus versicolor and agricultural wastes as a carbon source. Ecological Engineering, v.73, p. 224 - 328, 2014.

KHAN, I. H.; SOHRAB, H.; RONY, S. R.; TAREQ, F. S.; HASAN, C. M.; MAZID, A. Cytotoxic and antibacterial naphthoquinones from an endophytic fungus, Cladosporium sp. Toxicology Reports, 2016. https://doi.org/10.1016/j.toxrep.2016.10.005

KIM, J. Y.; YEO, S. H; BAEK, S. Y; CHOI, H. S. Molecular and morphological identification of fungal species isolated from Bealmijang Meju. Journal of Microbiology and Biotechnology, v.21, p. 1270–1279, 2011. https://doi.org/10.4014/jmb.1105.05013

KUMAR, S.; STECHER, G.; TAMURA, K. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution, v.33, n.7, p.1870 - 1874, 2016. https://doi.org/10.1093/molbev/msw054.

MADEIRA, J. V. Jr.; MACEDO, J. A.; MACEDO, G. A. Detoxification of castor bean residues and the simultaneous production of tanase and phytase by solid-state fermentation using Paecilomyces variotii. Bioresource Technology, v.102, n.15, p.7343 - 7348, 2011. https://doi.org/10.1016 /j.biortech.2011.04.099

MINAMI, M.; KTA, M.; NAKAYA, T.; YAMAMOTO, T.; KURIYAMA, H.; IMANISHI, J. The inhibitory effect of essential oils on herpes simplex virus type-1 replication in vitro. Microbiology and Immunology, v.47, n.9, p. 681 - 684, 2003. https://doi.org/10.1111/j.1348-0421.2003.tb03431.x.

LIBRADO, P.; ROZAS, J. DnaSP version 5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics, v.25, n.11, p.1451-1452, 2009. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/ btp187

MEHRABAN, A.; NASR, R.; ESLAMI, M.; AMROLLAHI, H. Molecular and morphological identification of fungi isolated from sour cherry, plum and apple fruit leather in Iran. Gene Reports, v.17, 100500, 2019. https://doi.org/10.1016/j.genrep.2019.100500

PANIZO, M. M.; REVIAKINA, V.; DOLANDE, M.; SELGRAD, S. Candida spp. in vitro susceptibility profile to four antifungal agents. Resistance surveillance study in Venezuelan strains. Medical Mycology, v.47, n.2, p.137-143, 2009. https://doi.org/10.1080/13693780802144339

RAJA, H. A.; MILLER, A. N.; PEARCE, C. J.; OBERLIES, N. H. Fungal Identification Using Molecular Tools: A Primer for the Natural Products Research Community. Journal of Natural Products, v. 80, n. 3, p. 756–770, 2017. https://doi.org/ 10.1021/acs.jnatprod.6b01085

SAITOU, N.; NEI, M. The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology and Evolution, v.4, n.4, p.406 – 425, 1987. https://doi.org/ 10.1093/ oxfordjournals.molbev.a040454.

SANTOS, V. L.; LINARDI, V. R. Biodegradation of phenol by a filamentous fungi isolated from industrial effluents - identification and degradation potential. Process Biochemistry, v.39, p.1001-1006, 2004. https://doi.org/10.1016/S0032-9592(03) 00201-2

SANTOS, D. A.; MUNARI, A.M.; S. O.S.; S. FROZZA, T., BARCELLOS, J. A. P.; HENRIQUES, M., ELY, R. M. Brazilian red propolis extracts: study of chemical composition by ESI-MS/MS (ESI+) and cytotoxic profiles against colon cancer cell lines. Biotechnology Research and Innovation, v.3, n.1, p.1-11, 2019, https://doi.org/10.1016/j.biori.2019.02.001

SCHOCH, C. L.; SEIFERT, K. A.; HUHNDORF, S; ROBERT, V.; SPOUGE J. L.; LEVESQUE, C. A.; CHEN, W. C. Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode marker for fungi. Proceedings of National Academy of Sciences of the United States of America, v.109, n. 16, p. 6241-6246, 2012. https://doi.org/10.1073/pnas.1117018109

SEIBERT, J. B.; BAUTISTA-SILVA, J. P.; AMPARO, T. R.; PETIT, A.; PERVIER, P.; ALMEIDA, J. C. S.; AZEVEDO, M. C.; SILVEIRA, B. M.; BRANDÃO, G.C.; SOUZA, G. H. B.; TEIXEIRA, L.F.M.; SANTOS, O. D. H. Development of propolis nanoemulsion with antioxidant and antimicrobial activity for use as a potential natural preservative. Food Chemistry, v. 287, p.61-67, 2019. https://doi.org/10.1016/ j.foodchem.2019.02.078

SETO, Y.; KOGAMI, Y.; SHIMANUKI, T.; TAKAHASHI, K.; MATSUURA, H.; YOSHIHARA, T. Production of phleichrome by Cladosporium phlei as stimulated by diketopiperadines of Epichloe typhina, Bioscience, Biotechnology and Biochemistry. v. 69, n.8, p.1515 - 1519, 2005. https://doi.org/10.1271/bbb.69.1515

SIRIPATRAWAN, U.; VITCHAYAKITTI, W. Improving functional properties of chitosan films to be used as active food packaging by incorporation with propolis. Food Hydrocolloids, v.61, p. 695-702, 2016. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2016.06.001

SOUZA, G. G.; PFENNING, L. H.; DE MOURA, F.; SALGADO, M.; TAKAHASHI, J. A. Isolation, identification and antimicrobial activity of propolis-associated fungi. Natural Product Research. v.27, n. 18, p.1705-1707, 2013. https://doi.org /10.1080/14786419.2013.771348.

STEWART, J. E.; TURNER, A. N.; BREWER, M. T. Evolutionary history and variation in host range of three Stagonosporopsis species causing gummy stem blight of cucurbits. Fungal Biology, v.119, n.5, p.370-382, 2015. https://doi.org/ 10.1016/j.funbio.2014.12.008.

STUBIGER, G.; WUCZKOWSKI, M.; MANCERA, L.; LOPANDIC, K.; STERFLINGER, K.; BELGACEM, O. Characterization of yeasts and filamentous fungi using MALDI lipid phenotyping. Journal of Microbiological Methods, v.130, p. 27 - 37, 2016. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2016.08.010.

TAJIMA, F. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics, v. 123, n.3, p. 585-595, 1989. https://doi.org/ 10.1093/genetics/123.3.585.

TAMURA, K.; NEI, M.; KUMAR, S. Prospects for inferring very large phylogenies by using the neighbor-joining method. Proceedings of the National Academy of Sciences (USA), v.101, v.30, p. 11030 - 11035, 2004. https://doi.org/10.1073/pnas.0404206101

VINCZE, T.; POSFAI, J.; ROBERTS, R. J. NEBcutter: um programa para clivar ADN com enzimas de restrição. Nucleic Acids Research, v. 31, n.13, p. 3688 - 3691, 2003. https://doi.org/ 10.1093/nar/gkg526

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Publicado

2021-12-17

Como Citar

Ferreira, M. A., Costa, R. A. F., Bispo, A. S. da R., Choupina, A. B., Evangelista-Barreto, N. S., Carvalho, C. A. L. de, Estevinho, M. L. M. F., & Sodré, G. da S. (2021). Diversidade da microbiota de fungos da própolis in natura / Diversity of in natura propolis fungal microbiota. Brazilian Journal of Animal and Environmental Research, 4(4), 6369–6385. https://doi.org/10.34188/bjaerv4n4-122

Edição

v. 4 n. 4 (2021)

Seção

Artigos originais

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