Potencial ação de extratos de plantas na onicomicose causada por Trichophyton rubrum: Uma revisão integrativa / Potential action of plant extracts in onychomycosis caused by Trichophyton rubrum: An integrative review
DOI:
https://doi.org/10.34119/bjhrv4n2-303Keywords:
Extratos de plantas medicinais. Onicomicose. Trichophyton rubrum.Abstract
Introdução: As dermatomicoses são doenças cutâneas, causadas por diferentes espécies de fungos dermatófitos, leveduras e fungos filamentosos não dermatófitos. Eles podem degradar queratina, tendo como alvo regiões do corpo como estrato córneo da pele, unhas e couro cabeludo, e são comumente ocasionadas por Trichophyton rubrum. A onicomicoses, que atinge as unhas e/ou leito subungueal, é uma patologia de difícil tratamento. Um dos obstáculos para o tratamento convencional é a redução da eficiência dos fármacos devido ao aumento da resistência microbiana aos agentes antifúngicos, sendo assim a utilização de produtos naturais é uma alternativa favorável por ser fonte de agentes terapêuticos inovadores. Objetivo: avaliar o potencial antifúngico de extratos de plantas para possível desenvolvimento de novas alternativas medicamentosas. Metodologia: Trata-se de uma revisão do tipo integrativa, que utilizou as palavras-chaves “plant extract and onychomycosis” e “Trichophyton rubrum and plant extract”, para pesquisa nas bases de dados PubMed e LILACS. A seleção de artigos foi realizada entre os meses de agosto e setembro de 2020. Resultados: Os artigos selecionados mostram que extratos de plantas apresentam atividade antifúngica contra T. rubrum, inibindo seu crescimento, a germinação de conídios e crescimento radial do micélio in vitro. Conclusão: as plantas medicinais podem ser uma alternativa para o tratamento da onicomicose, porém mais estudo são necessários para que a eficácia antifúngica possa ser verdadeiramente comprovada e suprir as limitações encontradas nas terapias atuais.
References
AALA F, Yusuf UK, Nulit R, Rezaie S. Inhibitory effect of allicin and garlic extracts on growth of cultured hyphae. Iran J Basic Med Sci. 2014; 17(3): 150-4.
BALAKUMAR S, Rajan S, Thirunalasundari T, Jeeva S. Antifungal activity of Aegle marmelos (L.) Correa (Rutaceae) leaf extract on dermatophytes. Asian Pac J Trop Biomed. 2011;1(4): 309-12. doi: 10.1016/S2221-1691(11)60049-X
BARROSO, L. C. Dermatofitoses em pessoas atendidas em um serviço público de micologia de Manaus/AM: epidemiologia e possíveis fontes de infecção. Manaus: Instituto Leônidas e Maria Deane – Fiocruz Amazônia, Manaus; 2017. 84 f. Disponível em: https://www.arca.fiocruz.br/bitstream/icict/26559/2/Disserta%C3%A7%C3%A3o%20Layssa %20Barroso.pdf. Acesso em: 03 abr. 2020.
BIASI-GARBIN R P, Demitto F O, Amaral R C R, Ferreira M R A, Soares L A L, Svidzinski T I E, et al. Antifungal Potential of Plant Species From Brazilian Caatinga Against Dermatophytes. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. 2016; 58, 18. doi: 10.1590/S1678-9946201658018
BONA E A M, Pinto F G S, Fruet T K, Jorge T C M & Moura A C. Comparação de métodos para avaliação da atividade antimicrobiana e determinação da concentração inibitória mínima (CIM) de extratos vegetais aquosos e etanólicos. Arquivos do Instituto Biológico. 2014; 81(3): 218-225. doi: 10.1590/1808-1657001192012
BRASIL. Ministério da Saúde. Secretaria de Ciência, Tecnologia e Insumos Estratégicos. Departamento de Assistência Farmacêutica. Política e Programa Nacional de Plantas Medicinais e Fitoterápicos / Ministério da Saúde, Secretaria de Ciência, Tecnologia e Insumos Estratégicos, Departamento de Assistência Farmacêutica. – Brasília: Ministério da Saúde, 2016. 190 p. Disponível em:http://bvsms.saude.gov.br/bvs/publicacoes/politica_programa_nacional_plantas_medicinais_fitoterapicos.pdf. Acesso em: 26 set. 2020.
BROOKS, G. F. Microbiologia médica de Jawetz, Melnick e Adelberg. 26ª ed. Porto Alegre: Amgh, 2014. p 677-680
CAMPANA E H, Carvalhaes C G, Barbosa P P, Machado A M O, Paula A M & Gales A C. Avaliação das metodologias M.I.C.E.®, Etest® e microdiluição em caldo para determinação da CIM em isolados clínicos. Jornal Brasileiro de Patologia e Medicina Laboratorial. 2011; 47(2): 157-164. doi: 10.1590/S1676-24442011000200011
CECHINEL FILHO V, Yunes R A. Estratégias para a obtenção de compostos farmacologicamente ativos a partir de plantas medicinais: conceitos sobre modificação estrutural para otimização da atividade. Quím. Nova. 1998; 21(1): 99-105.
doi: 10.1590/S0100-40421998000100015
DA X, Nishiyama Y, Tie D, Hein KZ, Yamamoto O, Morita E. Antifungal activity and mechanism of action of Ou-gon (Scutellaria root extract) components against pathogenic fungi. Sci Rep. 2019; 8;9(1):1683. doi: 10.1038/s41598-019-38916-w.
DAELE R V, Spriet I, Wauters J, Maertens J, Mercier T, Van H S, et al; Antifungal drugs: What brings the future?, Medical Mycology. 2019; 57(3): P S328 – S343. doi: 10.1093/mmy/myz012
DAS J, Jha DK, Policegoudra RS, Mazumder AH, Das M, Chattopadhyay P, et al;. Isolation and Characterization of Antidermatophytic Bioactive Molecules from Piper longum L. Leaves. Indian J Microbiol. 2012;52(4):624-9. doi: 10.1007/s12088-012-0303-x
DAS J, Lahan JP, Srivastava RB. Solanum melongena: A potential source of antifungal agent. Indian J Microbiol. 2010;50(1):62-9. doi: 10.1007/s12088-010-0004-2
DERBY R, Rohal P, Jackson C, Beutler A, Olsen C. Novel treatment of onychomycosis using over-the-counter mentholated ointment: a clinical case series. J Am Board Fam Med. 2011;24(1):69-74. doi: 10.3122/jabfm.2011.01.100124.
DEVI WR, Singh SB, Singh CB. Antioxidant and anti-dermatophytic properties leaf and stem bark of Xylosma longifolium clos. BMC Complement Altern Med. 2013; 2;13:155. doi: 10.1186/1472-6882-13-155.
DHAMOON RK, Popli H, Gupta M. Novel Drug Delivery Strategies for the Treatment of Onychomycosis. Pharm Nanotechnol. 2019;7(1):24-38. doi: 10.2174/2211738507666190228104031.
DUARTE L S I, Meza M Y, Monserrat A N, María T, Aldama O M, Pereira B J G, et al; Características epidemiológicas da onicomicose na consulta dermatológica. Revista Nacional (Itauguá). 2019; 11 (2): 5-18. doi: 10.18004/rdn2019.0011.02.005-018
DURAIPANDIYAN V, Al-Harbi NA, Ignacimuthu S, Muthukumar C. Antimicrobial activity of sesquiterpene lactones isolated from traditional medicinal plant, Costus speciosus (Koen ex.Retz.) Sm. BMC Complement Altern Med. 2012; 7;12:13. doi: 10.1186/1472-6882-12-13.
FAJINMI OO, Grúz J, Tarkowski P, Kulkarni MG, Finnie JF, Van Staden J. Antifungal and antioxidant activities of Coleonema album and C. pulchellum against skin diseases. Pharm Biol. 2017;55(1):1249-1255. doi: 10.1080/13880209.2017.1296470.
FOSS SR, Nakamura CV, Ueda-Nakamura T, Cortez DA, Endo EH, Dias Filho BP. Antifungal activity of pomegranate peel extract and isolated compound punicalagin against dermatophytes. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2014; 5;13:32. doi: 10.1186/s12941-014-0032-6.
GAWDZIK A, Nowogrodzka K, Hryncewicz-Gwó?d? A, Maj J, Szepietowski J, Jankowska-Konsur A. Epidemiology of dermatomycoses in southwest Poland, years 2011-2016. Postepy Dermatol Alergol. 2019; 36(5):604-608. doi: 10.5114/ada.2018.80615.
GAZIANO R, Campione E, Iacovelli F, Marino D, Pica F, Di Francesco P,et al;. Antifungal activity of Cardiospermum halicacabum L. (Sapindaceae) against Trichophyton rubrum occurs through molecular interaction with fungal Hsp90. Drug Des Devel Ther. 2018; 12;12:2185-2193. doi: 10.2147/DDDT.S155610.
GHUMAN S, Ncube B, Finnie JF, McGaw LJ, Coopoosamy RM, Van Staden J. Antimicrobial Activity, Phenolic Content, and Cytotoxicity of Medicinal Plant Extracts Used for Treating Dermatological Diseases and Wound Healing in KwaZulu-Natal, South Africa. Front Pharmacol. 2016; 30;7:320. doi: 10.3389/fphar.2016.00320.
GOMES NGM, Oliveira AP, Cunha D, Pereira DM, Valentão P, Pinto E, et al;. Flavonoid Composition of Salacia senegalensis (Lam.) DC. Leaves, Evaluation of Antidermatophytic Effects, and Potential Amelioration of the Associated Inflammatory Response. Molecules. 2019; 10;24(14):2530. doi: 10.3390/molecules24142530.
GUPTA AK, Stec N, Summerbell RC, Shear NH, Piguet V, Tosti A, et al;. Onychomycosis: a review. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020;34(9):1972-1990. doi: 10.1111/jdv.16394.
HEIDRICH D, Garcia MR, Stopiglia CD, Magagnin CM, Daboit TC, Vetoratto G, et al;. Dermatophytosis: a 16-year retrospective study in a metropolitan area in southern Brazil. J Infect Dev Ctries. 2015; 29;9(8):865-71. doi: 10.3855/jidc.5479.
HONÓRIO I C G, Bonfim, Filipe Pereira Giardini, Montoya, Sebastián Giraldo, Casali, Vicente Wagner Dias, Leite, João Paulo Viana, & Cecon, Paulo Roberto. (2016). Crescimento, desenvolvimento e conteúdo de flavonóides em calêndula (Calendula officinalis L.). Acta Scientiarum. Agronomy, 38 (1), 69-75. doi:10.4025/actasciagron.v38i1.25976
IMANIRAMPA L, Alele PE. Antifungal activity of Cleome gynandra L. aerial parts for topical treatment of Tinea capitis: an in vitro evaluation. BMC Complement Altern Med. 2016; 8;16:194. doi: 10.1186/s12906-016-1187-9.
JYOTHILAKSHMI M, Jyothis M, Latha MS. Antidermatophytic Activity of Mikania micrantha Kunth: An Invasive Weed. Pharmacognosy Res. 2015;7(Suppl 1): S20-5. doi: 10.4103/0974-8490.157994.
KOLARSICK P A J; Kolarsick M A M S N, Goodwin ARHP-C, Carolyn APRN-BC. Anatomia e fisiologia da pele. Revista da Associação dos Enfermeiros de Dermatologia.2011;3(4): 203-213 doi: 10.1097 / JDN.0b013e3182274a98
KUETE V, Azebaze AGB, Mbaveng AT, Nguemfo E L, Tshikalange E T, Chalard P, et al;. Atividades antioxidantes, antitumorais e antimicrobianas do extrato bruto e compostos da casca da raiz de Allanblackia floribunda, Pharmaceutical Biology. 2011; 49: 1, 57 -65, DOI: 10.3109 / 13880209.2010.494673
LIANG PP, Huang XZ, Yi JL, Chen ZR, Ma H., Ye CX, et al;. Um modelo de infecção por Trichophyton Rubrum baseado na epiderme humana reconstruída - Episkin®. Jornal médico chinês. 2016; 129 (1): 54–58. doi: 10.4103/0366-6999.172573
LIEW SS, Ho WY, Yeap SK, Sharifudin SAB. Phytochemical composition and in vitro antioxidant activities of Citrus sinensis peel extracts. PeerJ. 2018;6:e5331. doi: 10.7717/peerj.5331.
LIN HC, Kuo YL, Lee WJ, Yap HY, Wang SH. Antidermatophytic Activity of Ethanolic Extract from Croton tiglium. Biomed Res Int. 2016:3237586. doi: 10.1155/2016/3237586.
MAHBOUBI, M., KASHANI, L. M. T. The anti-dermatophyte activity of Commiphora molmol , Pharmaceutical Biology. 2016; 54(4): 720-725. doi: 10.3109 / 13880209.2015.1072831
MESQUITA DWO, Mesquita ASS, Cursino LMC, Souza E. S, Oliveira AC, Pinheiro CCS, et al;. Atividades biológicas de espécies amazônicas de Rubiaceae. Revista Brasileira de Plantas Medicinais. 2015; 17 (4): 604-613. doi: 10.1590/1983-084X/12_153
NENOFF P, Krüger C, Ginter-Hanselmayer G, Tietz HJ. Mycology - an update. Part 1: Dermatomycoses: causative agents, epidemiology and pathogenesis. J Dtsch Dermatol Ges. 2014;12(3):188-212. doi: 10.1111/ddg.12245.
OSTROSKY E A., Mizumoto M K., Lima M E. L, Kaneko T M, Nishikawa S O., & Freitas B R. Métodos para avaliação da atividade antimicrobiana e determinação da Concentração Mínima Inibitória (CMI) de plantas medicinais. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2008; 18(2), 301-307. doi: 10.1590/S0102-695X2008000200026
PÂRVU M, Mo? CA, Pârvu AE, Mircea C, Stoeber L, Ro?ca-Casian O, et al;. Composição química do extrato de Allium sativum, atividade antioxidante e efeito antifúngico contra Meyerozyma guilliermondii e Rhodotorula mucilaginosa, causando onicomicose. Molecules (Basel, Suíça). 2019;24 (21), 3958. doi: 10.3390/molecules24213958
PERES N T A, Maranhão F C A, Rossi A, & Rossi N M M. Dermatófitos: interação patógeno-hospedeiro e resistência a antifúngicos. Anais Brasileiros de Dermatologia. 2010; 85(5): 657-667. doi: 10.1590/S0365-05962010000500009
PERUSINHA C G, Rosado C., & Lencastre A. Novos avanços no tratamento da onicomicose. Jornal da Sociedade Portuguesa de Dermatologia e Venereologia. 2019; 77 (3): 239-243. doi: 10.29021/spdv.77.3.1104
PIRACCINI BM, Alessandrini A. Onychomycosis: A Review. J Fungi (Basel). 2015; 27;1(1):30-43. doi: 10.3390/jof1010030.
PRAKASH G, Hosetti BB. Bio-efficacy of Dioscorea pentaphylla from Midmid-Western Ghats, India. Toxicol Int. 2012;19(2):100-5. doi: 10.4103/0971-6580.97195.
RAHMAN A, Al-Reza SM, Siddiqui SA, Chang T, Kang SC. Antifungal potential of essential oil and ethanol extracts of Lonicera japonica Thunb. against dermatophytes. EXCLI J. 2014; 28(13): 427-36.
RIO GRANDE DO SUL. Secretaria de Estado da Saúde do Rio Grande do Sul. Ministério da Saúde. Departamento de Ações em Saúde. Plantas Medicinais do Jardim Botânico de Porto Alegre / Organização de Clarice Azevedo Machado, José Fernando da Rosa Vargas. Porto Alegre: Escola de Saúde Pública, 2018. 110p. Disponível em: https://saude.rs.gov.br/upload/arquivos/carga20190154/17115411-e-book-plantasmedicinais.pdf. Acesso em: 10 abr. 2020.
ROBBINS N, Wright G, Cowen L. Antifungal drugs: the current armamentarium and development of new agents. Microbiolspec. 2016; 4(5). doi:10.1128/microbiolspec.FUNK-0002-2016
ROMERO-CERECERO O, Islas-Garduño AL, Zamilpa A, Tortoriello J. Effectiveness of an encecalin standardized extract of Ageratina pichinchensis on the treatment of onychomycosis in patients with diabetes mellitus. Phytother Res. 2020; 34(7):1678-1686. doi: 10.1002/ptr.6644
SANGUINO TC, Jarros IC, Negri M. Ocorrência de dermatofitoses em pacientes do Sistema Único de Saúde. An Bras Dermatol. 2019; 94 (3): 293-297. doi: 10.1590 / abd1806-4841.20197491.
SANTOS M L, Magalhães C F, Rosa M B, Santos D A, Brasileiro B G, Carvalho L M, et al.; Antifungal activity of extracts from Piper aduncum leaves prepared by different solvents and extraction techniques against dermatophytes Trichophyton rubrum and Trichophyton interdigitale. Brazilian Journal of Microbiology. 2013; 44(4): 1275-1278. doi: 10.1590/S1517-83822013000400035
SANTOS, W. C, Silva F C, Pinto A C, Ferreira V F. Os Novos Fármacos Aprovados em 2014 pelo Food Drug Administration: Análise do Relatório de 2015.Rev. Virtual Quim. 2015; 7(4) :1535-1551. doi:10.5935/1984-6835.20150083
SILVEIRA, L. M. D. S. et al. Metodologias de atividade antimicrobiana aplicadas a extratos de plantas: comparação entre duas técnicas de ágar difusão.Rev. Bras. Farm.2009; 90(2): 124-128
TEINKELA J E M, Nguedia J C A, Meyer F, Donfack E V, Ndjakou B L, Ngouela S, et al;. Atividades antimicrobianas e anti-proliferativas in vitro de plantas, extratos de Spathodea campanulata, Ficus bubu e Carica papaya, Pharmaceutical Biology. 2016; 54 (6): 1086-1095. doi: 10.3109 / 13880209.2015.1103273
VUJI? B, Vidakovi? V, Jadranin M, Novakovi? I, Trifunovi? S, Teševi? V, Mandi? B. Composition, Antioxidant Potential, and Antimicrobial Activity of Helichrysum plicatum DC. Various Extracts. Plants (Basel). 2020;9(3):337. doi: 10.3390/plants9030337
XIA DA, Duerna T, Murata S, Morita E. In vitro Antifungal Activity of Japanese Folk Herb Extracts against Trichophyton rubrum. Biocontrol Sci. 2019;24(2):109-116. doi: 10.4265/bio.24.109
